Фармацевтический анализ производных бензопирана. Произвести анализ 3 новых препаратов этой группы.

В диапазоне 700–900 нм изменения интенсивности полос практически не наблюдалось, а полоса, соответствующая переходу 4F3/2 ← 4I9/2, в спектрах гетеролигандных комплексов расщепляется на две компоненты (870 и 865 нм).В качестве модели биологической среды был выбран 20%ный желатиновый блок. Подобие свойств желатинового геля и биологических тканей позволяет использовать его для моделирования действия лазерного излучения на различные объекты в онкологии [13].Спектры поглощения полученных образцов на основе комплексов (I–III) приведены на рис. 3. В биологическом «окне прозрачности» наблюдаются полосы поглощения иона неодима 4F7/2 ← 4I9/2, 4F5/2 ← 4I9/2, 4F3/2 ← 4I9/2 (750, 810, 880 нм), что подтверждает возможность использования исследуемых соединений в биологических объектах.Рис. 4. Спектрыпоглощениягомолигандных (a) (NH2CH2COO)3Nd (штриховаялиния), [NH2CH(CH3)COO]3Nd (точки), [(CH3)NHCH2COO]3Nd (сплошнаялиния) игетеролигандныхкомплексов (б) (I) (штриховаялиния), (II) (точки), (III) (сплошнаялиния) вводе (с 0.05 моль/л).Электронные спектры поглощения регистрировали на UV/Vis спектрофотометре Perkin Elmer Lambda 25 при комнатной температуре в области 200–1100 нм. ИК спектры получали на ИК Фурьеспектрометре ФСМ 1201 для образцов в вазелиновом масле. Элементный анализ выполняли на элементном CHNанализаторе Euro Vector EA 3000; содержание неодима определяли методом пиролитического сжигания по несгорающему остатку. Термогравиметрический анализ выполнен на установке Pyris 6 TGA в атмосфере воздуха со скоростью 5 град/мин.Экспериментальные методикиСпектры ЯМР 1H регистрировали на спектрометре Varian Unity300. Химические сдвиги даны относительно сигнала ТМС (внутренний эталон). Массспектры получены на массспектрометре Finnigan MAT INCOS 50. ИК спектры регистрировали на спектрометре IR75 для образцов в вазелиновом масле. Хроматографирование проводили на колонках Al2O3 IIIII степени активности по Брокману. Температуры плавления измеряли в стеклянных капиллярах на приборе ПТП и не корректировали. Ацетонитрил очищали по стандартным методикам, перхлорат тетерабутиламмония (Bu4NClO4) получали нейтрализацией гидроксида тетрабутиламмония, перекристаллизовывали из смеси гексан–этилацетат. Сушили при 70°С в вакууме в течение суток.Вольтамперометрические измерения проводили на установке, состоящей из потенциостата РА2 и двухкоординатного самописца ЛКД4. Рабочая скорость развертки в экспериментах составляла 5·10–2– 5·10–1 В/с. В эксперименте использовали трехэлектродную ячейку с рабочим объемом 2 мл. В качестве рабочего электрода использовали стационарный платиновый дисковый электрод диаметром 2 мм, либо платиновый ультрамикроэлектрод диаметром 20–30 мкм. Электрод сравнения – насыщенный каломельный с водонепроницаемой перегородкой или хлорсеребряный. Вспомогательным электродом служила вольфрамовая проволока диаметром 1 мм. В ячейку помещали раствор фонового электролита в ацетонитриле, с 0.1 моль/л, и в течение 5 мин продували очищенный аргон, после чего снимали вольтамперограмму фона. В ячейку добавляли навеску исследуемого вещества (с 10–2 или 5·10–3 моль/л), после повторной продувки аргоном регистрировали соответствующую вольтамперограмму на самописце. После снятия двух циклов промывали электроды ацетоном. Поверхность рабочего электрода зачищали фильтровальной бумагой и вновь регистрировали вольтамперограммы. Электрохимическая ячейка представляла собой стеклянную пробирку на шлифе с тефлоновой пробкой. Обратимость процесса в методе циклической вольтамерометрии определяли по отношению тока катодного и анодного пиков (при полной обратимости это соотношение равно единице), а также по разности потенциалов катодного и анодного пиков (для обратимого процесса Е 58 мВ).Список литературыГосударственная фармакопея СССР. М., 1989. Вып. 2. 400 с.http://www.dorogaistin.ruhttp://www.travolekar.ru/articles.phpПономарев В.Д. Экстрагирование лекарственного сырья. М., 1976. 186с.Куркин В.А. Фармакогнозия : учебник для студентов фармацевтических вузов. Самара, 2004. 1180 с.Алефиров А.Н. Фитотерапия против онкологии. СПб., 2010. 240 с.Полуконова Н.В., Меркулова Е.П., Дурнова Н.А., Романтеева Ю.В., Бородулин В.Г. Изучение антиоксидантной активности экстракта аврана лекарственного на крысах с перевитой опухолью печени РС1 // Биологически активные вещества: фундаментальные и прикладные вопросы получения и применения : тез. докл. научи.практ. конф. Киев, 2011. С. 585.Наволокин Н.А., Павлова А.В. Морфологические изменения в мышцах у лабораторных крыс и определение токсичности при введении экстракта аврана // Бюллетень медицинских Интернетконференций. 2012. Вып. 2. С. 82-83.Navolokin N.A., Polukonova N.V., Maslyakova G.N., Bucharskaya A.B., Durnova N.A. Effect of extracts of Gratiola officinalis and Zea mays on the tumor and the morphology of the internal organs of rats with trasplanted liver cancer // Russian Open Medical Journal. 2012. Vol. 1, N2. С 0203. URL: http://www.romj.org/20120203Государственная фармакопея РФ. М., 2008. 704 с.Байтман Т.П., Наволокин Н.А. Влияние экстракта аврана лекарственного на лабораторных животных с перевитой саркомой S45 //Бюллетень медицинских Интернетконференций. 2013. Т. 3, №2. С. 374.Navolokin N.A., Polukonova N.V., Bucharskaya A.B., Maslyakova G.N. Morphofunctional changes in laboratory rats with transplanted liver cancer PC1 after prolongated peroral administration of flavonoid containing extracts // Вестникроссийскогогосударственногомедицинскогоуниверситета. 2012. Вып. 1. С. 277-278.Наволокин Н.А., Полуконова Н.В., Маслякова Г.Н., Бучарская А.Б, Дурнова Н.А. Морфология внутренних органов и опухоли лабораторных крыс с перевитым раком печени Рс1 при пероральном введении флавоноидсодержащих экстрактов аврана лекарственного (Gratiola officinalis L.) и кукурузы антоциановой (Zea mays L.) // Саратовский научномедицинский журнал. 2013. Т. 9, №2. С. 213-220.Наволокин Н.А., Полуконова Н.В., Маслякова Г.Н, Скворцова В.В., Байтман Т.П., Бучарская А.Б., Дурнова Н.А. Противоопухолевая активность растительных экстрактов, содержащих биофлавоноиды // Российский биотерапевтический журнал. 2013. Т. 12, №2. С. 59-59а.