Распространение трихофитии КРС в южных регионах РФ и современные средства борьбы с заболеванием
Заказать уникальную дипломную работу- 72 72 страницы
- 70 + 70 источников
- Добавлена 03.07.2024
- Содержание
- Часть работы
- Список литературы
ВВЕДЕНИЕ 3
Цель работы 3
Для достижения этой цели поставлены следующие задачи: 3
Предмет исследования 4
Объект исследования 4
Гипотеза исследования 4
Теоретические основания 4
Научно-практическая новизна 4
Результаты работы, выносимые на защиту 4
Теоретическая и практическая значимость исследований 5
ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ 6
1.1. Трихофития. Эпидемиология и клинические проявления 6
1.2.Пути проникновения возбудителей дерматофитозов и формирование миконосительства у животных. 9
1.3.Диагностика трихофитии у КРС. 14
1.4.Профилактика трихофитии. 17
1.5.Лечение трихофитии 21
1.6. Зарубежный опыт борьбы с трихофитией 26
ГЛАВА 2. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ЧАСТЬ 29
2.1.Материалы и методы 29
2.2.Результаты исследования зооэпидемиологической ситуации в регионе 39
2.3. Экономическое обоснование 61
Выводы. 63
Заключение 64
Согласно данным анализа в рамках одного хозяйства, при менее интенсивных схемах воспроизводства поголовья в хозяйстве уменьшалось количество регистрируемых случаев трихофитии среди телят (Рисунок 8).Рисунок 8. Зависимость количества регистрируемых случаев трихофитии среди телят от интенсивности схем воспроизводства поголовья.Помимо этого, закупка животных из внешних источников, в сравнении с вариантами, когда животных размножали только в рамках хозяйства, приводили к вспышкам трихофитии, что может быть связано как с плохим санитарным контролем на ферме-производителе, так и с угрозой заражения в процессе транспортировки, из-за кучного содержания и маленькой площади/ вентилируемости транспортных фургонов (Рисунок 9).Рисунок 9. Корреляция вспышек трихофитии в животноводческом хозяйстве в зависимости от закупки животных в апреле и октябре.Как мы видим на Рисунке 9, каждая закупка животных из внешнего источника сопровождалась вспышкой трихофитии в хозяйстве и снижалась в течении полутора-двух месяцев после. И, для сравнения, на Рисунке 10 представлена динамика вспышек трихофитии в хозяйстве, где воспроизводство поголовья осуществляется в рамках самого хозяйства, без закупки животных из внешних источников. Мы видим корреляцию с осенне-зимним периодом, но количество животных значительно меньше, чем в хозяйстве, где закупались и транспортировались животные.При этом, анализ данных в Таблице 1 выявил статистически значимую корреляцию в месяцы, когда закупались животные, и в последующий месяц, в показателях заболеваемости трихофитией.Рисунок 10. Корреляция вспышек трихофитии в животноводческом хозяйстве в зависимости от сезона при воспроизведении поголовья в рамках одного хозяйства.Таблица 1. Корреляция вспышек трихофитии в животноводческом хозяйстве в зависимости от способа получения новых животныхКоличество выявленных случаев трихофитииМесяцПри закупке животныхПри воспроизведении в рамках одного хозяйстваЯнварь16±1,1513±1,2Февраль9±1,44±0,9Март00Апрель34±1,5*0Май15±1,4*0Июнь00Июль00Август00Сентябрь00Октябрь18±2,0*0Ноябрь6±1,51±0,9Декабрь2±0,6*11±0,9Примечание:*- отличия статистически значимы относительно показателей заболеваемости хозяйств, где воспроизводили животных самостоятельно. t-тест Стьюдента, p<0,05Помимо этого, важным условием является малая площадь на 1 животное. На основании расчетов по условиям содержания, общей площади загонов для скота и частоте случаев возникновения трихофитии был рассчитан показатель риска заражения КРС (Таблица 2). Так при площади 1,5 м2 на теленка риск заражения трихофитией был в 2,5 раза выше, чем при площади 3 м2, и в 6 раз выше, чем при увеличении этой площади до 5 м2 (Рисунок 11).Рисунок 11. Зависимость риска заражения трихофитией от площади содержания на 1 животное. Таблица 2. Корреляция между риском заражения трихофитией и площадью содержания на 1 животное.Площадь содержания на 1 животное (м2)Риск заражения трихофитией (%)1,556±6,2322,4±3,1*59,3±2,7* #Примечание:*- отличия статистически значимы относительно показателей содержания в 1,5 м2. t-тест Стьюдента, p<0,05#- отличия статистически значимы относительно показателей содержания в 3 м2. t-тест Стьюдента, p<0,05Кроме того, безусловным фактором, влияющим на частоту возникновения трихофитии, является кратность уборки помещений. Безусловно, чем больше хозяйство, тем сложнее проводить частую уборку всех помещений содержания животных, однако это является одним из наиболее критичных факторов в распространении трихофитии. Так, при анализе данных от хозяйств, при уборке раз в неделю риск возникновения трихофитии был в 2,3 раза выше, чем при уборке 2 раза в неделю (Рисунок 12).Рисунок 12. Зависимость риска распространения трихофитиии от частоты уборки помещений содержания КРС.Таким образом, на примере анализа по трем хозяйствам мы видим, что зооэпидемиологическая ситуация в южном регионе РФ все еще сохраняется на довольно высоком уровне и проявляет сезонность.Вспышки трихофитии КРС до сих пор не редкость и данные по статистике за 2020-2023 гг это подтверждают. Помимо этого, большое количество факторов содержания/восполнения поголовья являются важными в показателях распространения трихофитии среди КРС и игнорирование их приводит к увеличению процента вспышек заболевания в животноводческих хозяйствах.2.3.Анализ эффективности вариантов лечения, применяемых для борьбы с трихофитией Для исследования было выбрано поголовье трех животноводческих хозяйств, и проанализированы меры профилактики и лечения трихофитии.Для начала оценили эффективность применяемых вакцин. Наиболее часто применялись вакцины ЛТФ-130 и ЛТФ-201. Вакцину ЛТФ-130 вводят внутримышечно в область ягодичных мышц двукратно с интервалом 10-14 дней.Вакцину ЛТФ-201 вводят внутримышечно внутримышечно в область груди, шеи или заднебедренной группы двукратно с интервалом 10-14 дней.Эффективность вакцинации оценивали как показатель процент инфицирования животных от общего числа вакцинированных, в пятилетний промежуток с момента вакцинации. Полученные данные для вакцины ЛТФ-130 представлены на Рисунке 13, для Вакцины ЛТФ-201 на Рисунке 14.Рисунок 13. Процент инфицирования животных от общего числа вакцинированных, в пятилетний промежуток с момента вакцинации ЛТФ-130.Рисунок 14. Процент инфицирования животных от общего числа вакцинированных, в пятилетний промежуток с момента вакцинации ЛТФ-201.Таким образом, на основании полученных данных мы видим, что вакцина ЛТФ-130 лучше обеспечивает стойкий иммунитет при введении молодым телятам, в то время, как использование ее для повторной вакцинации взрослых особей дает менее выраженную реакцию и, как следствие, более слабую защиту. При сравнении показателей с использованием непарного t-теста Стьюдента были получены статистически значимые различия в показателях процента инфицирования животных от общего числа вакцинированных, в пятилетний промежуток с момента вакцинации.И наоборот, для вакцины ЛТФ-201 проеденное исследование показало, что она лучше обеспечивает стойкий иммунитет при повторной вакцинации взрослых особей, в то время, как ведение молодым телятам дает менее выраженную реакцию и, как следствие, более слабую защиту. При сравнении показателей с использованием непарного t-теста Стьюдента были получены статистически значимые различия в показателях процента инфицирования животных от общего числа вакцинированных, в пятилетний промежуток с момента вакцинации (Таблица 3).Таблица 3. Сравнение показателей эффективности применения вакцин ЛТФ-130 и ЛТФ-201 у молодых и взрослых животных. Процент инфицирования животных от общего числа вакцинированныхЛТФ-130ЛТФ-201Телята до 4 мес12,1±1,128,1±1,1Взрослые особи25,0±0,7*14,8±1,2*Примечание:*- отличия статистически значимы относительно показателей телят до 4-х месяцев, вакцинироанных этой же вакциной. t-тест Стьюдента, p<0,05Далее сравнивали эффективность обработки шерсти здоровых животных местными обеззараживающими средствами и скорость выздоровления животного. Для этого сравнивали показатели восстановления шерстяного покрова (в днях) с момента начла нанесения препарата, и до момента появления шерсти на пораженных участках, в зависимости от формы трихофитии (Таблица 4 и Таблица 5). Таблица 4. Скорость восстановления шерстяного покрова у животных с поверхностной формой трихофитии.Время до появления нового шерстяного покрова (дни)Зоомикол22,8±1,2Мазь «ЯК»18,6±0,5*Мазь Неофунгин26,2±0,6Имаверол27,8±0,5Мазь «Тербинафин»17,8±0,4Примечание:*- отличия статистически значимы относительно показателей группы, получавшей лечение Зоомиколем. t-тестаСтьюдента, p<0,05Как видно на Рисунке 15, наибольшую скорость восстановления шерстяного покрова мы наблюдаем при применении мазей «ЯК» и «Тербинафин».Таблица 5. Скорость восстановления шерстяного покрова у животных с глубокой формой трихофитии.Время до появления нового шерстяного покрова (дни)Зоомикол27,2±1,1Мазь «ЯК»29,6±0,5*Мазь Неофунгин28,2±0,8Имаверол29,4±0,5Мазь «Тербинафин»19,2±0,4Примечание:*- отличия статистически значимы относительно показателей группы, получавшей лечение Тербинафином. t-тест Стьюдента, p<0,05Рисунок 15. Количество дней, необходимых для восстановления шерстяного покрова (среднее значение) при применении различных лекарственных средств у животных с поверхностной формой трихофитии.При этом, на Рисунке 16, мы видим другую картину. При утяжелении формы трихофитии меняется эффективность некоторых препаратов. Так, мазь «ЯК» снижает свою эффективность, Имаверол имеет наименьшие различия по количеству дней выздоровления при тяжелой и средней формах трихофитии, а «Тербинафин» сохраняет свою эффективность.Рисунок 16.Количество дней, необходимых для восстановления шерстяного покрова (среднее значение) при применении различных лекарственных средств у животных с глубокой формой трихофитии.Полученные данные показали, что все используемые препараты эффективно борются с трихофитией, как при поверхностной форме заболевания, так и при глубокой. Однако, препараты содержащие серу и цинк (Мазь «Як») оказалась наиболее эффективной при поверхностной форме. При этом, в случае более тяжелого течения заболевания ее эффективность сильно снижалась. Остальным лекарственным средствам требовалось больше дней на восстановление шерстяного покрова при более тяжелой форме, но наибольшую эффективность (наименьшее количество дней на восстановление) показала мазь «Тербинафин».На последнем этапе проводили оценку совместного использования вакцины ЛТФ-130 и местных препаратов, с целью изучения эффективности их комбинированного действия (Таблица 6, Таблица 7). Таблица 6.Скорость восстановления шерстяного покрова у животных с поверхностной формой трихофитии при комбинированном леченииВремя до появления нового шерстяного покрова (дни)Зоомикол + ЛТФ-13021,8±1,1Мазь «ЯК» + ЛТФ-13017,2±0,4Мазь Неофунгин+ ЛТФ-13023,2±1,1Имаверол+ ЛТФ-13024,8±1,3*Мазь «Тербинафин» + ЛТФ-13015,8±0,3Примечание:*- отличия статистически значимы относительно показателей группы, получавшей лечение Тербинафином. t-тестаСтьюдента, p<0,05Как видно на Рисунке 17, наиболее эффективной по показателю времени восстановления шерстяного покрова при поверхностной форме, также как и при монолечении оказались комбинации мази «ЯК» и мази «Тербинафин» с вакциной ЛТФ-130. При этом добавление вакцины снижало количество дней, необходимых для появления шерстяного покрова на пораженных участках.Рисунок 17. Количество дней, необходимых для восстановления шерстяного покрова (среднее значение) при применении комбинированной терапии у животных с поверхностной формой трихофитии.Таблица 7.Скорость восстановления шерстяного покрова у животных с глубокой формой трихофитии при комбинированном леченииВремя до появления нового шерстяного покрова (дни)Зоомикол + ЛТФ-13024,1±1,2Мазь «Як» + ЛТФ-13023,8±0,9Мазь Неофунгин+ ЛТФ-13025,1±1,7Имаверол+ ЛТФ-13026,6±1,4Мазь «Тербинафин» + ЛТФ-13020,3±1,0Примечание: Статистически значимых различий не было выявлено.При этом, на Рисунке 18 мы видим, что наиболее эффективными по показателю времени восстановления шерстяного покрова при прогрессировании формы трихофитии, оказались комбинации мази «Зоомикол», «ЯК» и мази «Тербинафин» с вакциной ЛТФ-130. При этом добавление вакцины снижало количество дней, необходимых для появления шерстяного покрова на пораженных участках.Рисунок 18. Количество дней, необходимых для восстановления шерстяного покрова (среднее значение) при применении комбинированной терапии у животных с глубокой формой трихофитии.Таким образом мы видим, что совместное применение вакцин и препаратов наружного применения повышает скорость восстановления шерстяного покрова у КРС при трихофитии. И наибольшую эффективность показала комбинация мази «Тербинафин» + вакцина ЛТФ-130, которая превосходила по показателям восстановления все другие группы при лечении поверхностных форм и проявляла тенденцию к сокращению дней на восстановление при глубокой форме.2.3. Экономическое обоснованиеТаким образом мы видим, что трихофития у КРС до сих пор остается проблемой даже для крупных животноводческих хозяйств. Наиболее часто выспышки регистрируются в зимнее время. В зимний период одна корова дает в среднем 12-14 литров/сут. Среднее время выздоровления после начала лечения составляет 1 мес. Однако с учетом времени выявления заболевания и карантинизации животногго после окончания лечения, до момента возвращения в производственный процесс – среднее время выпадания животного из производственного цикла – 1,5 мес.Согласно полученным в исследовании данным, в среднем около 38% средний процент заболеваемости трихофитией в зимнее время.Таки образом, согласно предоставленным публичным данным, ориентировочные затраты на простой составляют:для ОАО «Кировский конный завод»696 голов (дойного скота) х 0,38% = 265 голов265 голов х 12 л/сут х 45 дней = 143 100 л молока за одну вспышку трихофитиидля СПК (колхоз) «КОЛОС»1203 головы (дойного скота) х 0,38% = 457 голов457 голов х 12 л/сут х 45 дней = 246 780 л молока за одну вспышку трихофитиидля СЗАО «СКВО» Зерноградского района1450 головы (дойного скота) х 0,38% = 551 голова551 голова х 12 л/сут х 45 дней = 297 540 л молока за одну вспышку трихофитииСредневзвешенная цена на сырое молоко, могласно данным Dairy Index DIA в 2023г превысила 35 руб./кг. На 16 октября 2023 индекс составил 35,29 руб./кгТаким образом, ориентировочные потери каждого из хозяйств составят:для ОАО «Кировский конный завод» 143 100 х 35,29 = 5 049 999 руб для СПК (колхоз) «КОЛОС» 246 780х 35,29 = 8 708 867 руб для СЗАО «СКВО» Зерноградского района 297 540х 35,29 = 10 500 187 рубПредставленные цифры являются ориентировочными рассчетами, но даже из них наглядно видна экономическая целесообразности проведения своевременной вакцинации животных от трихофитии.Выводы. Зооэпидемиологическая ситуация в регионе все еще сохраняется на довольно высоком уровне и проявляет сезонность. Существует ряд эффективных мер по борьбе с трихофитией, но наибольшую эффективность показывает своевременная вакцинация животных. Вакцина ЛТФ-130 обеспечивает стойкий иммунитет при введении молодым телятам, в то время, как использование ее для повторной вакцинации взрослых особей дает менее выраженную реакцию. Вакцина ЛТФ-201 лучше обеспечивает стойкий иммунитет при повторной вакцинации взрослых особей, в то время, как ведение молодым телятам дает менее выраженную реакцию.Совместное применение вакцин и препаратов наружного применения повышает скорость восстановления шерстяного покрова у КРС при трихофитии. Наибольшую эффективность показала комбинация мази «Тербинафин» + вакцина ЛТФ-130, которая превосходила по показателям восстановления все другие группы при лечении поверхностных форм и проявляла тенденцию к сокращению дней на восстановление при глубокой форме.ЗаключениеПроведенное исследование показало, что бремя трихофитии все еще оказывает влияние на экономическую выгоду животноводческих хозяйств, и хотя мы наблюдаем тенденция на снижение показателей заболеваемости к 2023г., южные регионы РФ все еще являются неблагополучными по показателю трихофитии крупного рогатого скота. Своевременное применение вакцин может улучшить эту ситуацию, однако необходимо учитывать разную эффективность у молодых и взрослых животных. И не смотря на доказанную эффективность применения комбинированной терапии, добиться полного контроля над заболеванием только применением лекарств, без учета влияния факторов санитарно-гигиенического контроля и содержания – невозможно. Таки образом, подход к искоренению трихофити крупного рогатого скота заключается в изменении условий содержания животных, усилению мер санитарно-гигиенического контроля и применению наиболее эффективных схем вакцинации и лечения.
1. Алиев А.С. Эпизоотология с микробиологией : учебник для вузов / А. С. Алиев,Ю. Ю. Данко, И. Д. Ещенко [и др.] ; Под редакцией В. А. Кузьмина, А. В. Святковского. — 7-е изд., стер. — Санкт-Петербург : Лань, 2022. — ISBN 978-5-507-44161-7.
2. Бовкун, Г. Ф. Ветеринарная микробиология и микология : учебно-методическое пособие / Г. Ф. Бовкун. — Брянск : Брянский ГАУ – 2019. — 198 с.
3. Гусев А. А. Современные иммунобиологические препараты для ветеринарии/ А. А. Гусев, В. А. Бабак // Международный вестник ветеринарии – 2023 – № 1
4. Галяутдинова, Г. И. Фармайод и Каролин при лечении больных трихофитией телят / Г. И. Галяутдинова, А. И. Иванов // Зыкинские чтения: Материалы Национальной научно-практической конференции, посвященной памяти доктора медицинских наук, профессора Леонида Федоровича Зыкина. - Саратов: ООО «ЦеСАин» – 2021. - С. 58-62.
5. Закиров Т.М. Ветеринарная санитария / Т.М/ Закиров? Н.И. Садыков, Д.Н. Мингалеев, [и др.]. – Казань: Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана – 2021 – 288 с.
6. Зевакин В.В., Особенности популяционного здоровья крупного рогатого скота в условиях конкретного хозяйства Нижегородской области // Вестник Нижегородской государственной сельскохозяйственной академии. – 2019. – № 3 (23) – С. 59-64.
7. Иванюк, В. П. Диагностический подход при исследовании поверхностных микозов животных / В. П. Иванюк, Г. Н. Бобкова – Текст: непосредственный //Вестник Брянской государственной сельскохозяйственной академии. – 2020. – №. 4 (80). – С. 15-19.
8. Кузнецов А. Ф. Крупный рогатый скот: содержание, кормление, болезни: диагностика и лечение / А. Ф. Кузнецов, А. А. Стекольников, И. Д. Алемайкин [и др.] ; Под ред.: Кузнецов А. Ф.. — 5-е изд., стер. — Санкт-Петербург : Лань, 2022. — ISBN 978-5-507-45370-2.
9. Мингалеев Д.Н. Инвазионные болезни молодняка жвачных животных в РТ / Д.Н. Мингалеев, М.Х. Лутфуллин, А.И. Трубкин, , Г.С. Фролов. – Казань: Казанская государственная академия ветеринарной медицины имени Н.Э. Баумана – 2022 – 134 с.
10. Скосырских Л.Н., Особенности диагностики трихофитии и моракселлеза крупного рогатого скота в условиях промышленного животноводства // В сборнике: Интеграция науки и практики для развития агропромышленного комплекса. Материалы 2-ой национальной научно-практической конференции – 2019 – С. 275-280.
11. Трубкин А.И. Правила отбора и пересылки патологического материала для лабораторного исследования на инфекционные болезни / А.И. Трубкин, Т.М. Закиров, Г.С. Фролов. – Казань: Казанская ГАВМ – 2021 – 94 с.
12. Фролов Г.С. Инфекционные болезни молодняка сельскохозяйственных животных / А.И. Трубкин, М.Х. Лутфуллин, Д.Н. Мингалеев, Г.С. Фролов. – Казань: Казанская государственная академия ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана – 2022 – 177 с.
13. Abdullah TK, Wadee SA, Owain MS. Isolation, diagnosis and incidence of ringworm in cattle in Salah Al-Din Governorate / T.K. Abdullah, S.A. Wadee, M.S. Owain // Vet Pract – 2021 – 22 (2) – 62-64.
14. Al-Farha A.A., Evaluation of three topical antifungals against bovine ringworm/ A.A. Al-Farha, A.A. Mahmood // Vet Pract – 2021 – 22 (2) – 41-44.
15. Cafarchia C., An improved molecular diagnostic assay for canine and feline dermatophytosis/ C. Cafarchia , R.B. Gasser, L.A. Figueredo, [et al.] // Med. Mycol. – 2013 – 51 pp. 136-143
16. Dechasa T., Bovine dermatophytosis in Holeta agricultural research center, Ethiopia / T. Dechasa , A. Wondimu, T. Abinet // J Vet Med Anim Health – 2017 – 9 – pp. 92-96,
17. Gnat S., Infection of Trichophyton verrucosum in cattle breeders, Poland: a 40-year retrospective study on the genomic variability of strains / S. Gnat, D. Lagowski, A. Nowakiewicz, A. Trościańczyk, // Mycoses – 2018 –– 61 – pp. 681-690
18. Hizli H., A study on the use of henna plant (Lawsonia inermis Linn) for the treatment of fungal disease (Trichophypton verrucosum) in calves / H. Hizli // J Hell Vet Medical Soc – 2020 – 71 (4) – 2483-2490.
19. Apaydin Y.B., Evaluation of biochemical parameters and oxidative stress in native and crossbred cattle naturally infected with dermatophytosis / Y.B. Apaydin// GSC Biol Pharm Sci – 2020 – 13 (2) – 99-104.
20. Hubka V., Common and emerging dermatophytoses in animals: well-known and New threats / V. Hubka, A. Peano, A. Cmokova, J. Guillot //Emerging and Epizootic Fungal Infections in Animals, Springer International Publishing, Cham – 2018 – pp. 31-79,
21. Jameel G. H., Ivermectin activity in treatment of cattle dermatopyhtosis / G. H. Jameel, // Diyala Agricultural Sciences Journal – 2015 – 7(1) – 30-40.
22. Larsson C.E., Tratado de medicina externa: dermatologia veterinária (2 ed.) / C.E. Larsson, R. Lucas //São Caetano do Sul, Interbook – 2020 – pp. 19-72
23. Samanta I., Cutaneous, subcutaneous and systemic mycology /I. Samanta // Veterinary Mycology. Springer, New Delhi: – 2015 – pp.11- 153
24. Tartor Y.H., Ringworm in calves: Risk factors, improved molecular diagnosis, and therapeutic efficacy of an Aloe vera gel extract / Y.H. Tartor, W.M. El-Neshwy, A.M.A. Merwad [et al.] //BMC Vet Res – 2020 – 16 (1) – pp.1-15.
25. Van Daele R., Antifungal drugs: what brings the future?/ R. Van Daele, I. Spriet, , J. Wauters, J. Maertens [et al.] //Medical mycology – 2019 – 57(Supplement_3) – pp.328-343.
26. Ural K., Immunization with Trichophyton verrucosum vaccine in hunter/jumper and dressage horses with naturally occurring Trichophyton equinum infection: a prospective, randomized, doubleblinded, placebo-controlled clinical trial/ K. Ural, B. Ulutas // Journal of Equine Veterinary Science – 2008 – 28(10) – pp.590-593.
27. Yarijani Z.M., Reduction of cisplatin-induced renal and hepatic side effects in rat through antioxidative and anti-inflammatory properties of Malva sylvestris L. extract/Z.M. Yarijani, A. Godini, S.H. Madani, H. Najafi // Biomed Pharmacother – 2018 – 106 – pp.1767-1774.
28. Зоомикол ® инструкция по применению/ Справочник Видаль. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vidal.ru/veterinar/zoomikol-29135
29. Неофунгин ® инструкция по применению/ Справочник Видаль. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vidal.ru/drugs/neofungin__6068
30. ЯМ БК ® инструкция по применению/ Справочник Видаль. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vidal.ru/veterinar/unguentum-yam-bk-27995
31. Имаверол ® инструкция по применению/ Справочник Видаль. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vidal.ru/veterinar/imaverol-29139
32. Тербинафин ® инструкция по применению/ Справочник Видаль. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vidal.ru/drugs/terbinafine__30960
33. Тривит ® инструкция по применению/ Справочник Видаль. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.vidal.ru/veterinar/trivit-27809
34. Саинова Г.А., Способ лечения трихофитии крупного и мелкого рогатого скота / Г.А Саинова., Д.К. Сунакбаева, А.Д. Акбасова // Международный журнал экспериментального образования. – 2015. – № 11-5. – С. 673-675;
35. Кухар Е.В. Биологические свойства и молекулярно-генетическая характеристика зоофильного штамма Trichophytonverrucosum, выделенного от человека/ Е.В. Кухар // Вестник науки КАТУ им. С. Сейфуллина. – 2019. – No 3. – С. 172–184.
36. Grills C.E. Microsporum canis: report of a primary school outbreak / C.E. Grills, P.L. Bryan, E. O’Moore [et al.] // The Australasian Journal of Dermatology. – 2007. – Vol. 48, N 2. – pp. 88–90.
37. Morrell J., Primary care and specialty care delays in diagnosing Trichophyton verrucosum infection related to cattle exposure/ J. Morrell , E. Stratman. // Journal of Agromedicine. – 2011. – Vol. 16, N 4. – pp. 244–250.
38. Moriello K. Feline dermatophytosis: aspects pertinent to disease management in single and multiple cuttle situations/ K. Morello // Journal of Feline Medicine and Surgery. – 2014. – Vol. 16, N 5. – pp. 419–431.
39. Госманов Р. Г. Частная ветеринарно-санитарная микробиология и вирусология / Р. Г. Госманов, Р. Х. Равилов, А. К. Галиуллин [и др.] // СПб.: Лань – 2019 – 316 с.
40. Госманов Р.Г. Практикум по ветеринарной микробиологии и микологии: учеб. пособие для студентов высш. аграр. учеб. заведений, обучающихся по специальности "Ветеринария" / Р.Г. Госманов, Н.М. Колычев, А.А. Барсков. //СПб.: Лань – 2014 – 380 с.
41. Akil M. From diagnosis to recovery: A practical approach to ringworm treatment in cattle // M. Akil , P.S. Kaurav, R. Khan, N.S. Meena // The pharma Innovation Journal. – 2023. – 12(5). – pp.3714-3716.
42. Abdeen E., Overview on bovine dermatophytosis / E. Abdeen, M. Walid // The International Journal of Veterinary Science and animal husbandry – 2018 – 3(2) – pp.16-19
43. Mahmood S.L., Ringworm among cattle/ S.L. Mahmood, A. Khan, N.M. Saeed , R.Z. Abbas//Aguilar-Marcelino L, Younus M, (eds), One Health Triad, Unique Scientific Publishers, Faisalabad, Pakistan – 2023 – Vol. 3 – pp. 34-38.
44. Spergser J., Agreement between Clinical Assessment and Laboratory Diagnosis of Ringworm in Calves at Auction Markets/ J. Spergser, T. Neuhuber, G. Kaltenegger // Animals (Basel) – 2024 – Feb – 14(3) – P.390
45. Havlickova B., Epidemiological trends in skin mycoses worldwide/ B. Havlickova , V.A. Czaika V.A., M. Friedrich// Mycoses – 2008 – 51(Suppl. 4) – pp.2–15.
46. Arabatzis M., Diagnosis of common dermatophyte infections by a novel multiplex real-time polymerase chain reaction detection/identification scheme/ M. Arabatzis, L.E. Bruijnesteijn van Coppenraet, E.J. Kuijper [et al.]// Br. J. Dermatol – 2007 – 157 – pp.681–689.
47. Papini R., High infection rate of Trichophyton verrucosum in calves from Central Italy/ R. Papini, S. Nardoni, A. Fanelli, F. Mancianti // Zoonoses Public Health – 2009. – 511. – pp.59-64.
48. Agnetti F., Trichophyton verrucosum infection in cattle farms of Umbria (Central Italy) and transmission to humans/ F. Agnetti, C. Righi, E. Scoccia [et al.]// Mycoses – 2014 – 57 – pp.400–405.
49. Lund A., Control of bovine ringworm by vaccination in Norway/ A. Lund, A.M. Bratberg, B. Næss, R. Gudding// Vet. Immunol. Immunopathol – 2014 – 158 – pp.37–45.
50. Łagowski D., A. Real-time PCR as an alternative technique for detection of dermatophytes in cattle herds/ D. Łagowsk, S. Gnat, A. Nowakiewicz, A. Trościańczyk // Animals. – 2021 – 11 – p.1662.
51. Gnat S., Infection of Trichophyton verrucosum in cattle breeders, Poland: A 40-Year retrospective study on the genomic variability of strains/ S. Gnat, D. Łagowski, A. Nowakiewicz [et al.] // Mycoses – 2018 – 61 – 681–690.
52. Piri F., Assessment of a pan-dermatophyte nested-PCR compared with conventional methods for direct detection and identification of dermatophytosis agents in animals/ F. Piri , A.Z. Mahmoudabadi, A. Ronagh [et al.] //Mycoses – 2018 – 61 – 837–844.
53. Łagowski D., Application of genotyping methods in the investigation of sources of dermatophytosis associated with vaccination in cattle/ D. Łagowski, S. Gnat, A. Nowakiewicz [et al.]// Ann. Appl. Biol. – 2020 – 177 – 325–332.
54. Spanamberg A., Bovine ringworm—Detection of Trichophyton verrucosum by SYBR-Green real-time PCR/ A. Spanamberg, A.P. Ravazzolo, R. Araujo [et al.]// Med. Mycol. Case Rep – 2023 – 39 – 34–37.
55. Cafarchia C., An improved molecular diagnostic assay for canine and feline dermatophytosis/ C. Cafarchia, R.B. Gasser, L.A. Figueredo [et al.] // Med. Mycol. – 2013 – 51 – 136–143.
56. Čmoková A., Resolving the taxonomy of emerging zoonotic pathogens in the Trichophyton benhamiae complex/ A. Čmoková, M. Kolařík, R. Dobiáš [et al.]// Fungal Divers – 2020 – 104 – 333–387.
57. Łagowski D.,. Application of genotyping methods in the investigation of sources of dermatophytosis associated with vaccination in cattle/ D. Łagowski, S. Gnat, A. Nowakiewicz [et al.]// Ann. Appl. Biol – 2020 – 177 – 325–332.
58. Hameed K., Trichophyton verrucosum infection in livestock in the Chitral district of Pakistan/ K. Hameed, M.A.Nawaz, S.M.S. Naqvi [et al.]// J. Infect. Dev. Ctries. – 2017 – 11 – 326–333.
59. Spiliopoulou A., Evaluation of a commercial PCR test for the diagnosis of dermatophyte nail infections/ A. Spiliopoulou, C. Bartzavali, E. Jelastopulu [et al.] // J. Med. Microbiol. – 2015 – 64 – 25–31.
60. Łagowski D., In search of the source of dermatophytosis: Epidemiological analysis of Trichophyton verrucosum infection in llamas and the breeder (case report)/ D. Łagowski, S. Gnat, A. Nowakiewicz [et al.] // Zoonoses Public Health. – 2019 – 66 – 982–989.
61. Fratti M, Survey on Dermatophytes Isolated from Animals in Switzerland in the Context of the Prevention of Zoonotic Dermatophytosis/ M. Fratti, O. Bontems, K. Salamin [et al.]// J Fungi (Basel) – 2023 – Feb 14;9(2) – 253.
62. Faggi E, Application of PCR to distinguish common species of dermatophytes/ E. Faggi, G. Pini, E. Campisi [et al.]// J Clin Microbiol. – 2001 – Sep;39(9) – 3382-5.
63. Hayette M.P., Dermatophytosis, trends in epidemiology and diagnostic approach/ M.P. Hayette, R. Sacheli //Curr. Fungal Infect. Rep – 2015 – 9: – 164–179.
64. Hay R.J., Tinea capitis: Current status / R.J. Hay // Mycopathologia – 2017 – 182 – 87–93
65. Georg L.K., Epidemiology of the dermatophytoses sources of infection, modes of transmission and epidemicity/ L.K. Georg // Ann. N. Y. Acad. Sci. – 1960 –;89 – 69–77.
66. Degreef H., Clinical forms of dermatophytosis (ringworm infection)/ H. DEgreef // Mycopathologia. – 2008 – 166 – 257–265.
67. Monod M., BDirect mycological examination in dermatology: A comparison of different methods/ M. Monod, F. Baudraz-Rosselet, A.A. Ramelet, E. Frenk // Dermatologica. – 1989 – 179 – 183–186.
68. de Hoog G.S., Toward a novel multilocus phylogenetic taxonomy for the dermatophytes/ G.S.de Hoog, K. Dukik, M. Monod , A. Packeu [et al.] // Mycopathologia. – 2017 – 182 – 5–31.
69. Abo-Elyazeed H,. Development, preparation, and evaluation of a novel non-adjuvanted polyvalent dermatophytes vaccine/ H. Abo-Elyazeed, R. Soliman, H. Hassan [et al.]// Sci Rep. – 2023 – Jan 4;13(1) – 157.
70. Nenoff P,. Mycology - an update. Part 1: Dermatomycoses: causative agents, epidemiology and pathogenesis/ P. Nenoff, C. Krüger, G. Ginter-Hanselmayer, H.J. Tietz // J Dtsch Dermatol Ges – 2014 – Mar;12(3 – 88-209.